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                LncRNA數據深度挖掘工具(二)

                更新時間:2024-08-27      點擊次數:608

                RIP(RNA Immunoprecipitation)RNA pull-down等實驗技術是我們深入研究RNA和蛋白質相互作用的關鍵工具。RIP運用目標蛋白的特異性抗體分離純化與蛋白相互作用的RNA,RNA pull-down通過RNA探針捕獲與之相互作用蛋白質。上文我們詳細了解了RIP技術,今天帶大家了解一下RNA pull-down技術。

                 

                RNA pull-down

                 

                RNA pull-down是研究細胞內RNA與蛋白/RNA結合情況的技術。先將RNA進行標記(如生物素標記),再與細胞裂解液共同孵育,從而形成RNA-RNA/蛋白質復合物,進而檢測與之結合的RNA或蛋白質。復合物洗脫后,通過熒光定量PCR(RNA pull down-QPCR)或高通量測序(RNA pull down-seq)方法來鑒定目標RNN是否與某些RNA分子相互作用,通過Western blot(pull down-WB)實驗和質譜(pull down--MS)技術檢測目標RNA是否與某些蛋白相互作用。

                 

                RNA Pull down技術原理

                 

                RNA pull down實驗的大致流程:

                 

                1、探針制備

                設計并合成含有T7啟動子的特異性引物。

                使用含有目的基因的質粒作為模板進行PCR擴增。

                利用PCR產物作為模板進行體外轉錄,獲得目的RNA。

                對目的RNA進行標記,通常使用生物素標記。

                 

                2、細胞裂解液準備

                收集細胞并裂解,制備細胞裂解液。

                通過離心去除細胞碎片,收集上清液。

                 

                3、RNA-蛋白質復合物形成

                將標記的RNA探針與細胞裂解液混合,在適宜條件下孵育,使得RNA與潛在的蛋白質結合并形成復合物。

                 

                4、磁珠結合與洗滌

                加入鏈霉親和素磁珠,這些磁珠能夠與生物素標記的RNA結合。

                顛倒混勻,使磁珠與RNA-蛋白質復合物充分接觸并結合。

                通過磁場分離磁珠,去除未結合的物質。

                多次洗滌磁珠,以去除非特異性結合的蛋白質。

                 

                5、富集蛋白的洗脫

                使用適當的洗脫緩沖液洗脫與RNA結合的蛋白質。

                 

                6、蛋白質檢測與鑒定

                SDS-PAGE電泳和銀染色以初步檢測富集到的蛋白質。

                質譜分析或Western blotting等技術進一步鑒定所富集的蛋白質。

                 

                7、數據分析

                分析質譜數據以確定與RNA相互作用的蛋白質種類。

                對鑒定到的蛋白質進行功能注釋和網絡分析,以理解RNA-蛋白質相互作用的生物學意義。

                 

                RNA pull down實驗流程

                 

                RNA pull down常見問題

                 

                1、實驗全程需要注意什么?

                實驗使用的所有試劑耗材需經過去RNA酶處理,樣本也需要加?蛋白酶和RNA酶抑制劑,最好能夠進行超聲處理。裂解蛋白的全程盡量在冰上操作。

                 

                2、除了體外轉錄,還有別的方式獲取目的RNA嗎?

                體外轉錄相比化學合成純度更高,pull-down實驗?般是體外轉錄得到目的RNA。但是當目的RNA序列大于2000bp時體外轉錄就不太容易轉錄成功,這種情況下,我們可以設計合成?小段目的RNA探針,通過探針與目的RNA結合,再與蛋白結合。

                 

                3、RNA體外轉錄濃度達到多少才能用,其OD?般都不高,可以使用嗎?如何定量呢?

                通過體外轉錄得到的RNA濃度都能達到2μg/uL以上,OD值不高可進行RNA純化,即便不純化在實驗中多加?些RNA亦可。定量?般會進行瓊脂糖凝膠電泳檢測,可以根據marker濃度來判斷RNA的濃度。也可以用儀器測量RNA的濃度。并且pull-down實驗不需要特別精確的定量,一般都會加入過量的探針。 

                 

                4、lncRNA引物設計與普通的引物設計有什么區別?

                體外轉錄擴增的引物只需要在正向引物5’端加?T7啟動子序列即可。 

                 

                5、做lncRNApull down+質譜?般都會發現多個互作蛋白對嗎?如何選擇哪一種蛋白繼續研究下去?

                不同的RNA結合蛋白的數量不等,不能一概而論,根據自己研究的方向或相關功能確定篩選蛋白。

                 

                凝膠遷移或電泳遷移率(EMSA)

                 

                除RIP和RNA pull Down以外,凝膠遷移或電泳遷移率檢測(Electrophoretic Mobility Shift Assay, EMSA),也稱為凝膠阻滯實驗或DNA結合實驗,是一種廣泛應用于分子生物學的研究技術,也可以用于研究蛋白質(尤其是轉錄因子)與DNA或RNA之間的相互作用。

                 

                基本原理

                 

                EMSA的基本原理是利用凝膠電泳技術來觀察蛋白質與DNA或RNA形成復合物后遷移速率的變化。當蛋白質與標記的DNA或RNA片段結合后,形成的復合物比未結合的探針分子更大,因此在電泳過程中遷移速度較慢。通過比較樣品中自由探針與結合探針的比例,可以推斷出蛋白質與核酸的結合情況。

                 

                EMSA基本原理

                 

                實驗步驟

                 

                準備樣本:提取細胞內的蛋白質或核蛋白。

                標記探針:使用放射性或非放射性標記技術標記特定的DNA或RNA序列。

                蛋白質-核酸結合:將標記的探針與待測蛋白質混合,允許它們結合。

                凝膠電泳:將混合物進行非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳。

                檢測:通過放射自顯影或其他檢測方法(如化學發光)來觀察條帶。

                 

                EMSA相關FAQ

                 

                1、三種實驗技術如何選擇?

                EMSA主要用于研究RNA與蛋白質之間的直接結合情況,比較傾向于定性分析,通常針對已知RNA研究相應蛋白,適用于初步篩選。

                RIP更適合研究體內條件下特定RNA結合蛋白與RNA的相互作用。

                RNA pull-down是一種直接鑒定與特定RNA結合的蛋白質的有效方法,適用于體外研究。

                選擇哪種方法取決于您的研究目標和可用資源。例如,如果您想鑒定特定RNA結合蛋白與哪些RNA分子相互作用,那么RIP可能是更好的選擇;如果您想研究特定RNA序列與哪些蛋白質相互作用,RNA pull-down可能是更合適的選擇。

                 

                2、為什么看不到遷移帶?

                樣本中的蛋白質含量不足;標記的探針濃度過低;標記效率低;蛋白質失活,確保蛋白質在處理過程中沒有變性或失活,避免反復凍融,使用新鮮制備的蛋白質樣品。曝光或檢測時間不足;復合物不穩定等因素。

                 

                3、實驗背景高是為什么?

                蛋白的質量不高,雜質多;曝光或者成像時間過長;封閉時間不足洗滌效果不佳;實驗過程中膜沒有一直處于濕潤狀態;標記探針的濃度過高等因素。

                 

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