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                國自然研究熱點“常青樹”—外泌體&miRNAⅢ

                更新時間:2024-01-16      點擊次數:810

                背景:

                 

                外泌體是細胞分泌的一類具有細胞間通訊作用的細胞外囊泡,已被證明外泌體中包含了大量的脂質、蛋白質、酶、核酸等生物活性物質。其中的微小RNA (microRNA,miRNA) 是外泌體中比較具代表性的,也是目前研究最多的核酸。miRNA是18-25個核苷酸的非編碼小RNA分子,它可以通過與靶mRNA的3’非翻譯區或開放閱讀框區域結合而介導轉錄后基因沉默,在細胞增殖、分化、遷移及疾病發生和發展等過程中發揮重要調控作用。

                 

                miRNA的生成:

                 

                miRNA基因在RNA聚合酶Ⅱ的作用下轉錄生成長度約為幾千個堿基的初級miRNA (pri-miRNA) 。pri-miRNA在蛋白復合物Drosha-DGCR8的作用下被加工成具有莖環結構的前體miRNA (pre-miRNA) ,pre-miRNA在轉運蛋白的協助下從核內轉運到細胞質中。在細胞質中,pre-miRNA被Dicer-TRBP識別,并通過對莖環結構的剪切和修飾,形成雙鏈成熟的miRNA,但其中一條鏈迅速降解,另一條鏈被轉載進AGO2蛋白中,形成RISC(RNA誘導沉默復合體),最終生成成熟的、具有功能單鏈miRNA。

                 

                單鏈miRNA與靶miRNA轉錄物相互作用,從而導致基因表達的抑制。


                圖 外泌體miRNA分泌機制

                 

                miRNA的特性:

                 

                1、高度保守性:miRNA保守性具有重要的生物學意義,提示在不同生物發育過程中,miRNAs具有相同的調控機制;

                2、組織表達特異性:一些miRNA表達具有細胞和組織特異性;

                3、時序表達特異性性:在不同組織、不同發育階段,miRNA的表達水平有顯著差異,miRNA表達是動態調控的。

                 

                miRNA的功能:

                 

                目前只有一小部分miRNAs生物學功能得到闡明。但這些miRNAs調節了細胞生長,組織分化,因而與生命過程中發育、疾病有關。通過對基因組上miRNA的位點分析,顯示其在發育和疾病中起了非常重要的作用。一系列的研究表明:miRNAs在細胞生長和凋亡,血細胞分化,神經元的極性,胰島素分泌,大腦形態形成,心臟發生,胚胎后期發育等過程中發揮重要作用。對于新的miRNA基因的分析,可能發現新的參與器官形成、胚胎發育和生長的調節因子,促進對癌癥等人類疾病發病機制的理解。

                 

                miRNA檢測方法:

                 

                考慮到miRNAs在基因調控和生物學功能中起到的關鍵作用,對miRNAs的特異性和敏感性檢測變得越來越重要。傳統的針對miRNA的檢測有Northern blotting、微陣列分析和定量聚合酶鏈反應 (qPCR) 。

                 

                1、Northern blotting

                 

                Northern blotting是檢測miRNA的標準和比較廣泛使用的方法。它不僅可以用于成熟miRNA的檢測,還可以用于其前體的檢測。其基本原理是將RNA樣品用限制性內切酶酶切,瓊脂糖凝膠電泳分離,根據其在凝膠中的位置變性并轉移到硝化纖維素膜或尼龍膜上,固定后與同位素或其他標記探針反應。洗凈游離探針后,可以通過放射自顯影或其他合適的技術檢測miRNA。Northern blotting可以檢測到miRNA的相對分子大小和相對豐度,但也存在半定量、低通量、繁瑣、耗時、RNA易降解等缺點。

                 

                2、微陣列分析

                 

                微陣列分析是快速、高通量檢測miRNA比較廣泛使用的方法。該方法原理是使用標記探針通過反轉錄產生樣品RNA,使用與目標miRNA具有相同序列的固相寡核苷酸檢測這些熒光團或生物素標記的cDNA。將標記的cDNA樣品裝入每個孔中,然后進行一系列洗滌步驟以去除游離DNA。如果雜交的cDNA被生物素化,鏈霉親和素標記的熒光團就可以被標記;如果用熒光團標記cDNA,則可以直接測量每個孔的熒光強度。每個孔的熒光強度可以用來確定miRNA的表達水平。雖然微列陣芯片針對的樣本數量很多,但是成本也非常高。另外太短、低拷貝數的miRNA無法被檢測到。

                 

                3、qPCR

                 

                qPCR因其動態范圍大、靈敏度高、序列特異性高,已成為檢測miRNA表達的常規可靠技術。首先通過逆轉錄反應將目標miRNA合成為cDNA,然后進行qPCR檢測。要進行miRNA逆轉錄,需要對miRNA分子進行加長改造,一種方法采取的是進行Poly (A) 加尾,另一種采取的莖環法進行加長。監測miRNA的qPCR方法有兩種:TaqMan探針法和SYBR Green熒光染料法。

                 

                miRNA定量全套實驗步驟:


                圖 miRNA qPCR解決方案

                 

                從各類樣本中提取miRNA,根據miRNA數量選擇不同逆轉錄方法合成cDNA(如何選擇miRNA逆轉錄方法見),最后進行miRNA定量。我們推薦從miRNA提取到逆轉錄、定量需要要配套的試劑盒。

                 

                一、miRNA提取

                 

                * 以血清血漿樣本為例進行介紹(血漿血清miRNA提取試劑盒,abs60264)

                 

                1、實驗前處理;

                1.1 實驗前自行準備:無水乙醇、1.5mL RNase-free滅菌離心管。
                1.2 取出洗滌液,按以下操作:
                a)洗滌液A:按終濃度30%的比例加入無水乙醇,如7mL加入3mL無水乙醇;14mL加入6mL無水乙醇,充分混勻。
                b)洗滌液B:按終濃度85%的比例加入無水乙醇,如1.5mL加入8.5mL無水乙醇;3mL加入17mL無水乙醇,充分混勻。
                * 配制好的洗滌液如出現沉淀,可在37℃溶解,搖勻后使用。

                 

                2、取無RNA酶的1.5mL離心管,加入200μL樣本,200μL miRNA釋放劑及20μL消化液,充分混勻,65℃水浴10min;
                3、加入5μL miRNA富集劑,0.85mL無水乙醇,輕輕顛倒混勻,如有半透明懸浮物,不影響RNA的提取與后續實驗;
                4、將吸附柱放入收集管內,將650μL上述溶液轉入吸附柱內,12000rpm離心1min,棄收集管內廢液;將剩余溶液轉移至吸附柱內,12000rpm離心1min,棄收集管內廢液;
                5、將吸附柱放回收集管內,加500μL洗滌液A至吸附柱內,靜置2min,12000rpm離心1min,棄收集管內廢液;
                6、將吸附柱放回收集管內,加500μL洗滌液B至吸附柱內,靜置2min,12000rpm離心1min,棄收集管內廢液;
                7、將吸附柱放回收集管內,加500μL洗滌液B至吸附柱內,12000rpm離心1min,棄收集管內廢液;
                8、按每份樣本30μL取洗脫液(如10份提取樣本,即取300μL洗脫液),放置于滅菌1.5mL離心管,65℃預熱;
                9、將吸附柱放回收集管內,12000rpm離心2min,離去殘留的洗滌液;
                10、取出吸附柱,放入新的1.5mL RNase-free滅菌離心管內,開蓋,室溫放置2min;
                11、在吸附柱中心加入30μL預熱洗脫液,靜置2min,12000rpm離心1min,收集miRNA溶液。提取的miRNA即可用于下一步實驗或-70℃保存。

                 

                二、miRNA逆轉錄

                 

                * 以加尾法為例進行實驗步驟介紹,血漿miRNA加尾法逆轉錄試劑盒(abs60266)

                 

                1、RNA加A尾

                 取RNase-free離心管,配制如下混合液:RNase free ddH2O to 20μL 、Poly A 1μL、2xPoly A Buffer 10μL、RNA 5~9μL輕輕混勻,37℃ 30min,迅速置于冰上。


                2、RT反應液配制:

                上述反應液在使用前5000rpm離心5s:取上述反應液8μL、2x RT Buffer 10μL、 RTase Mix 2μL用移液器輕輕吹打混勻。


                3、RT反應:

                25℃ 5min、50℃ 15min、85℃ 5min反應完畢后,5000rpm離心5s,盡快放于冰上,直接進行PCR反應。如暫時不用,請放置于-20°C以下溫度,在半年內使用完畢,不要反復凍融。模板如具有復雜二級結構或高GC區域,可將反應溫度提高至55℃。

                 

                三、miRNA qPCR

                 

                * 逆轉錄選擇加尾法,qPCR反應選擇配套的加尾法qPCR試劑盒,miRNA加尾染料法熒光定量PCR試劑盒(abs60271)

                 

                1、配制反應體系

                 

                取RNase-free離心管,配制如下混合液:

                2× miRNA SYBR Mastermix

                10uL

                Specific Primer(10uM)

                0.4uL

                Tag Primer(10uM)

                0.4uL

                Temlate DNA/cDNA

                2.0uL

                ddH2O

                to 20uL

                 








                * a)Specific Primer指miRNA的上游特異性引物,即由本公司設計的正向引物,一般標注為:xx-miR-X-X-F,該引物可自行設計合成,本公司也可免費提供設計;若使用U6作為參照時,Specific Primer標注為U6-Forward Primer。


                * b)Tag Primer為本公司專用miRNA反向引物,若使用U6作為參照時,Tag Primer標注為 U6-Reverse Primer。


                2、設置反應程序

                 


                激活Taq

                95℃ 5min

                PCR循環

                95℃ 10S;60℃ 30S;40循環

                熔解曲線

                95℃ 15S;60℃ 1min;95℃ 15S;1循環




                 

                * 儀器類型不同,熔解曲線采集程序不同,使用儀器默認熔解曲線采集程序即可。

                 

                3、檢測及結果分析

                 

                在適當的qPCR儀器上完成實驗,并分析結果。

                 

                FAQ:

                 

                1、miRNA逆轉錄&qPCR方法有哪些?

                 

                加尾法(常用,一次可以檢測多種miRNA,非常加方便);

                莖環法(常用,一次只能檢測一種miRNA,但是特異性高);

                探針法(較上面二種方法用的會相對少一些,特異性、靈敏度最高)。

                 

                2、miRNA逆轉錄加尾法與莖環法的具體區別?

                 

                1)加尾法:

                對所有的miRNA都進行polyA加尾,選用通用的逆轉錄引物,把所有的miRNA都進行逆轉錄,逆轉錄的產物可以分別用于各個miRNA的qPCR的反應。一般如果檢測的miRNA數量比較多的話,比較推薦加尾法做,因為一次性可以逆轉錄很多miRNA。(例如要檢測5種miRNA,就選加尾法,買一套試劑盒就能同時測5種)

                 

                2)莖環法

                對每個miRNA進行單獨逆轉錄,每個miRNA都要有特異的逆轉錄引物,同時qPCR引物也是特異的,所以它的特異性比加尾法高,但是一次只能測一種miRNA。當miRNA數量不多,選莖環會比較好。(例如要檢測1-2種miRNA,并且追求特異性,就選莖環法。)

                 

                3、miRNA逆轉錄和miRNA q-PCR一定要配套使用嗎?

                 

                是的,因為逆轉錄試劑盒和q-PCR試劑盒里面有成分相互關聯,不能分開使用,所以買逆轉錄就一定要買對應qPCR試劑,并且我們還免費設計引物。

                miRNA莖環法逆轉錄配miRNA莖環法qPCR;

                miRNA加尾法逆轉錄配miRNA加尾法qPCR;

                miRNA探針法逆轉錄配miRNA探針法qPCR。

                 

                4、哪種miRNA逆轉錄&qpCR選擇哪種方法價格便宜呢?

                 

                選擇加尾法還是莖環法,具體是看具體實驗需求,不能以價格來選擇;

                加尾法:一套試劑盒價格雖然貴些,但它一次能測多種miRNA,所以樣本量多的情況下價格又便宜了;

                莖環法:一套價格便宜,但是一次只能測一種,如果再測第二種第三種,又要重新設計引物,買試劑盒,總價格就高了。

                 

                5、miRNA引物怎么送?

                 

                免費設計1個miRNA引物,比如需要5個miRNA的引物,那么可以送其中一種,其余4種不送,需要定制合成購買,需要按照要求發送引物的目的基因。

                 

                6、關于miRNA引物合成,需要給什么信息?

                 

                需要發送引物的目的基因,也就是miRNA名字、ID號、序列,其中miRNA的名字和序列最重要,目的基因需要客戶自己去查詢確定;

                一般引物信息格式如下:hsa-miR-22-3p AAGCUGCCAGUUGAAGAACUGU。

                 

                7、引物哪些在試劑盒里,哪些不在試劑盒中?U6分別是幾條?

                 

                加尾法一套:

                miRNA加尾法逆轉錄(逆轉錄引物,通用的,在試劑盒里面);

                miRNA加尾法qPCR(送上游引物,是特異性引物,要單獨設計,不在試劑盒里面;下游引物,是通用引物,在試劑盒里面);

                U6內參:2條(不送,不在試劑盒里面,需要客戶自己準備);

                定量U6-F(指U6上游);定量U6-R(指U6下游)。

                 

                莖環法一套:

                miRNA莖環法逆轉錄(送莖環引物,是特異性引物,要單獨設計,不在試劑盒里面);

                miRNA莖環法qPCR(送上游引物送,是特異性引物,要單獨設計,不在試劑盒里面;送下游引物,是通用引物,在試劑盒里面);

                U6內參:3條(不送,不在試劑盒里面,要客戶自己準備。因為莖環法是特異的,所以它的U6也是要單獨設計一套);

                U6-NZL(指U6的逆轉錄);U6-F(指U6的上游);U6-R(指U6的下游)。

                 

                探針法一套:

                探針法逆轉錄(逆轉錄引物混在Taqman buffer里);

                探針法qPCR(上游+下游+探針,混在primer mix里,不是獨立的管子);

                U6內參(不送,U6上游+U6下游+探針,混合在一個管子,需要客戶自行購買)。

                 

                8、U6內參是什么?

                 

                內參是在各類細胞中普遍存在的一個基因,用于排除由于加樣量差異導致的誤差。做miRNA逆轉錄和qPCR實驗過程中是需要內參的,客戶一般會選擇合適的基因作為內參,不一定非要選擇U6。但一般都是以U6內參為主,它是比較常用的。

                 

                9、可以發送試劑盒引物序列嗎?

                 

                miRNA引物的序列公司這邊是保密的。如果客戶需要發表文章必須要用到的情況下可以提供,但是前提是需要客戶在文獻里寫明:設計與合成來自愛必信(上海)生物科技有限公司,并附上產品貨號。

                 

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                miRNA提取

                abs60264

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                100T

                abs60263

                外泌體RNA提取試劑盒

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                miRNA逆轉錄

                abs60266

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                50T

                miRNA qPCR

                abs60271

                miRNA加尾染料法熒光定量PCR試劑盒

                200T




                 

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                miRNA qPCR

                abs60271

                miRNA加尾染料法熒光定量PCR試劑盒

                200T

                abs60270

                miRNA莖環染料法熒光定量PCR試劑盒

                200T

                abs60272

                miRNA探針法熒光定量PCR試劑

                100T

                外泌體提取

                abs9775

                外泌體提取試劑盒

                1mL

                abs9777

                外泌體純化試劑盒(SEC)

                1mL






                參考文獻


                [1] Yu X, Odenthal M, Fries JW. Exosomes as miRNA Carriers: Formation-Function-Future. Int J Mol Sci. 2016 Dec 2;17(12):2028. doi: 10.3390/ijms17122028. PMID: 27918449; PMCID: PMC5187828.

                [2] Ye J, Xu M, Tian X, Cai S, Zeng S. Research advances in the detection of miRNA. J Pharm Anal. 2019 Aug;9(4):217-226. doi: 10.1016/j.jpha.2019.05.004. Epub 2019 May 25. PMID: 31452959; PMCID: PMC6702429.

                [3] 劉念,姚群峰.外泌體miRNA及其作為腫瘤分子標志物的研究進展[J].檢驗醫學與臨床,2021,18(03):417-420.

                [4] Yan S, Jiang Y, Liang C, Cheng M, Jin C, Duan Q, Xu D, Yang L, Zhang X, Ren B, Jin P. Exosomal miR-6803-5p as potential diagnostic and prognostic marker in colorectal cancer. J Cell Biochem. 2018 May;119(5):4113-4119. doi: 10.1002/jcb.26609. Epub 2018 Jan 25. PMID: 29240249.

                [5] Huang Y, Zou Q, Wang SP, Tang SM, Zhang GZ, Shen XJ. The discovery approaches and detection methods of microRNAs. Mol Biol Rep. 2011 Aug;38(6):4125-35. doi: 10.1007/s11033-010-0532-1. Epub 2010 Nov 25. PMID: 21107708.

                 

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